一、PCR的退火温度怎么设定？
PCR中退火的那步是引物与模板结合，一般来说，退火温度比Tm值要低上5度左右。另外，也可以根据你设计引物的软件比如primer5.0或Olige 6 推荐的温度。但这些都不是绝对的。
你要是在他的推荐温度下没有目的条带，你可以试试做一个温度梯度，摸索一下退火温度。
二、pcr仪器各个温度的含义？
PCR仪的三种控温模式
在进行PCR仪中控温模式设定时，一般有三个选项：Block、Tube及Probe。下面就这三种模式种简单的介绍：
PCR仪的温度传感器一般是在模块下面的，也就是说仪器实际能够控制的是模块的温度，Block模式指的就是仪器以控制Block的温度为目的，也就是说你输入95度5分钟，则模块的温度达到95度后开始计时，5分钟后完成。这是zui基本的控温模式。
但是，实际上我们输入95度5分钟是希望PCR管内的温度达到95后开始计时5分钟。PCR仪器开发人员可以先将模块温度控制到97度（比如而已，如果不超过95度，管内温度可以很长时间才能达到95度或根本达不到），过几秒钟后，等到管内温度达到95度，再将模块温度降到95度。这样做既达到了管内温度到95度，且速度较快。但过冲的温度量与时间及PCR管的导热系数、PCR反应液的体积都有关系。这就是各个PCR仪厂家的核心技术了。这种控温方式就称为Tube模式。
如果直接将一个温度传感器加入PCR管中，直接测量PCR管内的温度不是也可以吗？这就是Probe模式，也就是在一个不进行PCR反应的管内放入一个温度探头，仪器根据温度探头测到的温度来控制PCR管内的温度。但传感器的数据检测、分析及反馈是需要时间的，这种控制模式不一定比Tube模式好，而且如果反应体积发生变化时，就比较麻烦了。
因此，如今的PCR仪就都是Block和Tube两种模式了。如果是正常的PCR反应，一般选Tube模式。如果是长时间保温且对温度过冲要求很高，则可以考虑用Block模式。
三、pcr设定温度怎么来的？
pcr温度设定主要是4个依据：
1. DNA变性温度，这个一般而言94～98℃都能保证DNA完全变性，双链分开；
2.DNA复性，这个主要是指引物与模板DNA的复性，通过碱基配对形成双链DNA，因此，复性温度因引物不同而有差别；
3.DNA聚合酶活性，这个来源不同，不同突变，略有差异，一般65～72℃。
4.DNA 保存温度，一般情况下DNA在4～15℃可以稳定保存一定时间。因此，pcr结束后保持在这个温度均可。
四、如何设定梯度PCR的退火温度？
回答如下：设定梯度PCR的退火温度需要考虑以下几个因素：
1.引物的Tm值：引物的Tm值是引物特异性的反映，它是引物在PCR反应中结合到模板DNA上的温度。在设定梯度PCR的退火温度时，需要根据引物的Tm值来确定。
2.模板DNA的GC含量：模板DNA的GC含量也会影响PCR反应的退火温度。GC含量高的DNA需要更高的温度来使引物与DNA结合，因此需要设定较高的退火温度。
3.特定目的：设定梯度PCR的退火温度也要考虑到特定的PCR目的。例如，如果需要扩增特定长度的DNA片段，需要根据引物的长度和目标DNA的大小来确定退火温度。
一般来说，可以先进行一次试验，设定一个范围内的温度梯度，然后根据PCR扩增的效果和产物的质量来调整退火温度，直到得到理想的PCR产物。
五、pcr仪器 全名？
pcr仪是光度计，
分光光度计，又称光谱仪(spectrometer)，是将成分复杂的光，分解为光谱线的科学仪器。测量范围一般包括波长范围为380~780 nm的可见光区和波长范围为200～380 nm的紫外光区。不同的光源都有其特有的发射光谱,因此可采用不同的发光体作为仪器的光源。
六、冰晶带设定温度范围？
大部分食品中心温度从-1℃降至-5℃时，近80%的水分可冻结成冰。这个温度区间称为最大冰晶体生成带。 定义和品质如下：
1.大部分食品中心温度从-1℃降至-5℃时，近80%的水分可冻结成冰。这个温度区间称为最大冰晶体生成带。
2.最大冰晶体生成带是保证冻结食品质量的最重要的温度区，冰晶的生成方式对食品的品质起着较大的影响。
3.冻结时通过最大冰晶体生成带的时间短，品质好。
4.耐低温的微生物在最大冰晶体生成带温度范围内仍可生长繁殖。
5.有不少食品的冰点低于-1℃，最大冰晶生成带不同。
七、pcr的延伸温度可选择哪个范围？
1. PCR的延伸温度选择范围比较宽，主要取决于扩增目标序列的长度和目标序列所在的物种类型等因素。2. 在PCR扩增过程中，通常需要进行变温反应，即在不同的温度下进行不同的反应，以达到特定的扩增条件。其中延伸温度就是其中一个重要的环节，通常在60度到75度之间选择。较短的目标序列，延伸温度通常可以在65-72℃之间；而较长的目标序列，则需要较低的延伸温度，一般在60-68℃之间。3. 此外，不同的PCR扩增方法和引物组合等因素也会对延伸温度选择产生影响，因此在进行PCR扩增之前需要充分考虑实验设计和目标序列特点等方面的因素。
八、pcr循环条件的设定？
PCR是聚合酶链式反应(Polymerase Chain Reaction)的简称，是一种常用的分子生物学技术。PCR过程中如果没有找到最佳的扩增条件将会导致产生许多不确定的、不需要的产物，有时甚至没有目的产物；而在另一个极端，又可能没有扩增到任何产物。PCR反应条件包括：温度、时间和循环次数。
1、温度与时间的设置
基于PCR原理三步骤而设置变性-退火-延伸三个温度点。在标准反应中采用三温度点法，双链DNA在90～95℃变性，再迅速冷却至40 ～60℃，引物退火并结合到靶序列上，然后快速升温至70～75℃，在Taq DNA 聚合酶的作用下，使引物链沿模板延伸。对于较短靶基因(长度为100～300bp时)可采用二温度点法，除变性温度外、退火与延伸温度可合二为一，一般采用94℃变性，65℃左右退火与延伸(此温度Taq DNA酶仍有较高的催化活性)。
①变性温度与时间：变性温度低，解链不完全是导致PCR失败的最主要原因。一般情况下，93℃～94℃lmin足以使模板DNA变性，若低于93℃则需延长时间，但温度不能过高，因为高温环境对酶的活性有影响。此步若不能使靶基因模板或PCR产物完全变性，就会导致PCR失败。
②退火(复性)温度与时间：退火温度是影响PCR特异性的较重要因素。变性后温度快速冷却至40℃～60℃，可使引物和模板发生结合。由于模板DNA 比引物复杂得多，引物和模板之间的碰撞结合机会远远高于模板互补链之间的碰撞。退火温度与时间，取决于引物的长度、碱基组成及其浓度，还有靶基序列的长度。对于20个核苷酸，G+C含量约50%的引物，55℃为选择最适退火温度的起点较为理想。引物的复性温度可通过以下公式帮助选择合适的温度：
Tm值(解链温度)=4(G+C)＋2(A+T)
复性温度=Tm值-(5～10℃)
在Tm值允许范围内， 选择较高的复性温度可大大减少引物和模板间的非特异性结合，提高PCR反应的特异性。复性时间一般为30～60sec，足以使引物与模板之间完全结合。
③延伸温度与时间：Taq DNA聚合酶的生物学活性：
70～80℃ 150核苷酸/S/酶分子
70℃ 60核苷酸/S/酶分子
55℃ 24核苷酸/S/酶分子
高于90℃时， DNA合成几乎不能进行。
PCR反应的延伸温度一般选择在70～75℃之间，常用温度为72℃，过高的延伸温度不利于引物和模板的结合。PCR延伸反应的时间，可根据待扩增片段的长度而定，一般1Kb以内的DNA片段，延伸时间1min是足够的。3～4kb的靶序列需3～4min；扩增10Kb需延伸至15min。延伸进间过长会导致非特异性扩增带的出现。对低浓度模板的扩增，延伸时间要稍长些。
2、循环次数
循环次数决定PCR扩增程度。PCR循环次数主要取决于模板DNA的浓度。一般的循环次数选在30～40次之间，循环次数越多，非特异性产物的量亦随之增多。
九、pcr三个关键温度设定的依据是什么？
pcr三个关键温度设定的依据是，第一个一般在94－95度左右，叫做变性，就是通过加热打开双链。
第二个温度点叫做退火，根据引物的tm算出，一般比tm低5度，有利于引物的结合。
第三个温度叫做延伸，一般采用72度。是引物结合后dna聚合酶按照模板合成新的链。一分钟一千个碱基对。
十、冰箱温度设定后波动范围是多少？
冰箱温度设定后波动范围一般控制在3～5℃范围内是比较合适的。对冰箱来说，温度上限和下限的温差带范围过大，虽然可以降低冰箱压缩机的启停频次，但会导致冰箱内实际温度波动幅度过大，从而令所储存的食物变质速度加快。
如果温度上限和下限温差带范围过小，冰箱压缩机启停频次就会升高，冰箱总体耗电量变大。